一、核心原理：實(shí)時監(jiān)測與定量分析

　　qPCR在傳統(tǒng)PCR基礎(chǔ)上引入熒光標(biāo)記系統(tǒng)，通過實(shí)時監(jiān)測每個循環(huán)的熒光信號強(qiáng)度，實(shí)現(xiàn)擴(kuò)增產(chǎn)物的動態(tài)跟蹤。當(dāng)熒光信號達(dá)到預(yù)設(shè)閾值時，所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)即為Ct值（CycleThreshold）。由于Ct值與起始模板量呈負(fù)相關(guān)（模板量越多，Ct值越?。Y(jié)合標(biāo)準(zhǔn)曲線可實(shí)現(xiàn)絕對定量或相對定量分析。例如，在疾病診斷中，通過檢測病原體核酸的Ct值，可判斷感染程度；在基因表達(dá)研究中，比較不同樣本的Ct值差異，可分析基因表達(dá)水平。

　　二、熒光標(biāo)記體系：染料法與探針法

　　染料法（SYBRGreenI）

　　SYBRGreenI是一種嵌入型熒光染料，可非特異性結(jié)合雙鏈DNA（dsDNA）。在游離狀態(tài)下，染料熒光微弱；與dsDNA結(jié)合后，熒光強(qiáng)度增強(qiáng)1000倍。該方法操作簡便、成本低，但無法區(qū)分特異性產(chǎn)物與非特異性擴(kuò)增（如引物二聚體），需通過熔解曲線分析驗(yàn)證產(chǎn)物特異性。

　　探針法（TaqMan探針）

　　TaqMan探針為寡核苷酸鏈，5’端標(biāo)記熒光報告基團(tuán)，3’端標(biāo)記淬滅基團(tuán)。探針完整時，報告基團(tuán)熒光被淬滅；PCR擴(kuò)增時，Taq酶的5’→3’外切酶活性切割探針，釋放報告基團(tuán)，熒光信號與產(chǎn)物量同步累積。該方法特異性強(qiáng)（需引物與探針雙重匹配）、靈敏度高（可檢測單拷貝基因），且支持多重檢測（通過不同熒光標(biāo)記區(qū)分多個靶基因）。

　　三、Ct值：定量分析的核心參數(shù)

　　Ct值是qPCR結(jié)果解讀的關(guān)鍵指標(biāo)，其大小直接反映起始模板量。例如，在腫瘤標(biāo)志物檢測中，若患者樣本中某基因的Ct值顯著低于健康人群，可能提示基因過表達(dá)，與腫瘤發(fā)生相關(guān)。此外，Ct值還可用于評估實(shí)驗(yàn)效率：標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率接近-3.32時，擴(kuò)增效率達(dá)100%；若斜率偏離，需優(yōu)化反應(yīng)條件（如引物濃度、退火溫度）。

　　四、應(yīng)用場景與優(yōu)勢

　　qPCR廣泛應(yīng)用于疾病診斷（如新冠病毒檢測）、基因表達(dá)分析、轉(zhuǎn)基因檢測及SNP分型等領(lǐng)域。其核心優(yōu)勢包括：

　　高靈敏度：可檢測單拷貝基因；

　　高特異性：探針法通過雙重匹配確保結(jié)果準(zhǔn)確；

　　實(shí)時定量：無需電泳等后處理步驟，避免交叉污染；

　　寬動態(tài)范圍：可覆蓋5-6個數(shù)量級的模板濃度。

　　從原理到應(yīng)用，qPCR以熒光信號為“量尺”，為生命科學(xué)研究與臨床診斷提供了精準(zhǔn)、高效的核酸定量工具。